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Na eletroforese em gel, amostras de DNA ou proteínas são separadas - geralmente com base no tamanho - pela aplicação de um campo elétrico que os leva a migrar através de um gel. O uso da eletroforese em gel é rotineiro nos laboratórios de pesquisa biomédica e é usado para responder a uma variedade de perguntas diferentes, portanto, não existe realmente uma maneira universal de analisar os resultados.
Técnicas diferentes, como Western blotting, Northern blotting e Southern blotting, por exemplo, envolvem eletroforese em gel.
Se você estiver fazendo eletroforese em gel de agarose de amostras de DNA, o tipo mais comum de procedimento, você precisará fazer pelo menos duas coisas: 1) distinguir plasmídeos não cortados de inserções, plasmídeos cortados e plasmídeos cortados e, 2) estimar o tamanho dos vários Fragmentos de DNA com uma curva padrão Excel ou calculadora.
Aqui está como isso funciona.
Verifique o caderno de anotações do laboratório para determinar quais amostras foram carregadas em quais faixas. Ao carregar os poços para o seu gel, você deve ter notado a identidade de cada faixa / amostra.
Determine qual faixa contém a "escada" dos padrões de DNA. Estes são fragmentos de comprimento conhecido; sua distância de migração pode ser usada para determinar o tamanho dos fragmentos da amostra usando uma curva padrão do Excel ou outra calculadora.
Usando uma régua, meça a distância da sua foto dos poços até o corante de rastreamento, que terá viajado além de qualquer uma das faixas de DNA (em outras palavras, ela estará na parte inferior do gel). Registre esse número - as unidades que você usa não são importantes.
Meça a distância da sua foto dos poços para cada uma das bandas da "escada", depois divida essa distância pela distância percorrida pela faixa de corante de rastreamento. Este cálculo fornece a mobilidade relativa de cada banda.
Exemplo: suponha que a faixa de corante de rastreamento viajou 6 polegadas e temos três bandas que viajaram 5, 4,5 e 3,5 polegadas.
Qual é a sua relativa mobilidade? Resposta: Dividimos 5, 4,5 e 3,5 por 6 para obter mobilidades relativas de 0,833, 0,75 e 0,5833.
Insira as mobilidades relativas no seu programa de planilha (Excel ou qualquer outro programa similar que você use) juntamente com o tamanho em kilobases de cada fragmento na escada.
O fabricante fornece o tamanho de cada fragmento nas escadas fornecidas, portanto você já deve ter essas informações.
Faça um gráfico dos dados com mobilidade relativa no xe tamanho em kilobases no y.
Use a função Trendline no seu programa de planilhas para ajustar uma equação aos dados. Essa equação deve ser uma equação de potência (por exemplo, x ^ -2) e deve ajustar-se aos dados relativamente bem (coeficiente R de pelo menos 0,9). Isso cria uma curva e uma curva padrão do Excel.
Veja as bandas correspondentes às suas amostras.
Lembre-se de que fragmentos menores de DNA viajam mais longe através do gel do que fragmentos grandes de DNA; portanto, os mais próximos ao corante de rastreamento serão os menores. Observe, no entanto, que, se o DNA do plasmídeo (circular) não for cortado, ele ficará "superenrolado" ou torcido como um fio telefônico, o que realmente fará com que ele viaje mais que o DNA linear do mesmo tamanho.
Da mesma forma, um plasmídeo "cortado" que foi cortado incompletamente percorrerá um mais curta distância que o DNA linear do mesmo tamanho. Consequentemente, você não pode estimar o tamanho dos plasmídeos não cortados do seu gel.
Associe as faixas em cada faixa com a identidade da amostra carregada nessa faixa e determine se o que você vê é o que você esperaria. Isso vai depender da natureza do seu experimento.
Em geral, no entanto, se você digerisse um plasmídeo de inserção com duas enzimas de restrição, seria de esperar que a inserção fosse liberada do plasmídeo.
Como é muito menor que o plasmídeo, você esperaria ver duas bandas nessa faixa, uma perto do topo e a outra abaixo do fundo. Um corte de plasmídeo com apenas uma enzima de restrição deve formar apenas uma única banda que viaja um pouco mais longe do que o corte de plasmídeo com duas enzimas de restrição, mas longe de chegar ao inserto.
Meça a distância dos poços ao plasmídeo cortado e insira faixas com sua régua. Divida esses números pela distância percorrida pelo corante de rastreamento para encontrar a mobilidade relativa das pastilhas e cortar os plasmídeos.
Conecte a mobilidade relativa das pastilhas e corte os plasmídeos na equação que seu programa de planilhas calculou para você. Este cálculo deve fornecer uma estimativa do tamanho desses plasmídeos.